Questões de Concurso

Preparo do Exame Quantitativo e Qualitativo de Urina
Um técnico de laboratório está realizando um exame quantitativo de urina, mas a amostra apresenta um volume muito baixo. Como essa condição pode influenciar os resultados do exame, e quais medidas devem ser tomadas para garantir a precisão do diagnóstico?

Itens para Verificação:
1. Registrar o volume baixo da amostra e ajustar o cálculo de acordo com o volume disponível.
2. Considerar a necessidade de diluir a amostra para obter melhores resultados.
3. Utilizar um recipiente de coleta adequado para maximizar a quantidade de urina disponível para o exame.
4. Solicitar uma nova amostra se o volume for insuficiente para todas as análises necessárias.
5. Documentar qualquer ajuste ou diluição feita no relatório final.

Alternativas: 

Preparo de Amostras Biológicas para Pesquisa de Parasitas
Durante a preparação de uma amostra de fezes para a pesquisa de parasitas, o técnico nota que a consistência da amostra é muito líquida, o que pode interferir no resultado final. Quais passos devem ser seguidos para garantir que a análise seja precisa, mesmo com a consistência alterada da amostra?

Itens para Verificação:
1. Homogeneizar a amostra adequadamente antes de realizar o exame microscópico.
2. Utilizar uma técnica de sedimentação para concentrar os parasitas na amostra.
3. Anotar a consistência da amostra no laudo laboratorial.
4. Rejeitar a amostra, solicitando uma nova coleta em melhores condições.
5. Utilizar técnicas adicionais como a coloração de Kinyoun, pois é específica para o tipo de parasita.

Alternativas: 

Preparação de Esfregaços e Colorações em Microbiologia
Durante a preparação de um esfregaço para coloração de Gram, um técnico de laboratório acidentalmente utiliza álcool etílico em excesso durante o processo de descoloração. Como essa ação pode afetar os resultados do exame, e quais são as melhores práticas para evitar esse tipo de erro?

Itens para Verificação:
1. O uso excessivo de álcool pode resultar em uma descoloração excessiva, dificultando a diferenciação entre bactérias Gram-positivas e Gram-negativas.
2. A quantidade de álcool deve ser controlada rigorosamente para garantir uma descoloração adequada.
3. A repetição do procedimento de coloração não é necessária, se o esfregaço estiver comprometido.  
4. A utilização de um cronômetro durante a descoloração pode ajudar a evitar esse tipo de erro.
5. Corrigir o esfregaço comprometido e realizar uma nova coleta de amostra é a melhor prática em casos de erro.

Alternativas: 

Preparação e Coloração de Esfregaço Sanguíneo
Um esfregaço sanguíneo foi preparado e colorido utilizando o corante de Wright-Giemsa, mas ao observar a lâmina ao microscópio, o técnico nota que as células estão mal coradas. Quais são os possíveis fatores que poderiam ter levado a essa falha e como isso pode ser corrigido?

Itens para Verificação:
1. O tempo de coloração pode ter sido insuficiente, exigindo um tempo maior na solução de coloração.
2. O pH do corante pode estar inadequado, necessitando de verificação e ajuste.
3. A lâmina pode não ter sido fixada corretamente, comprometendo a coloração.
4. O corante pode estar vencido, requerendo substituição.
5. A observação deve ser feita em menor ampliação para ajustar o foco corretamente.

Alternativas: 

Manuseio do Microscópio Óptico
Durante a observação de um esfregaço sanguíneo ao microscópio óptico, o técnico percebe que a imagem não está focada corretamente, mesmo após vários ajustes. Qual é a sequência de passos que o técnico deve seguir para resolver o problema e obter uma visualização nítida?

Itens para Verificação:
1. Verificar se o microscópio está corretamente alinhado e se todas as lentes estão limpas.
2. Ajustar a iluminação do microscópio para garantir um campo claro.
3. Utilizar a objetiva de menor aumento para localizar a amostra antes de aumentar a ampliação.
4. Ajustar o foco utilizando o parafuso micrométrico, começando pelo ajuste grosso.
5. Caso o problema persista, realizar a manutenção do microscópio, incluindo a verificação das lentes.

Alternativas: